
廣州市黃埔區(qū)學(xué)大道攬?jiān)侣窂V州企業(yè)孵化器B座402
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項(xiàng)目名稱(chēng):(RNA-seq)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序及分析報(bào)告
所屬分類(lèi):生物信息學(xué)分析-報(bào)告解讀
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技術(shù)服務(wù)描述
轉(zhuǎn)錄組測(cè)序及分析報(bào)告
生信部
2021年03月19日
項(xiàng)目信息
合同編號(hào):xx-xx-202x-xx-xx
客戶(hù)姓名:xxx
客戶(hù)單位:xxxxxx
1. 分析流程
1.1. 建庫(kù)測(cè)序流程
??從RNA樣品提取到最終數(shù)據(jù)獲得,樣品檢測(cè)、建庫(kù)、測(cè)序等每一環(huán)節(jié)都會(huì)直接影響數(shù)據(jù)的數(shù)量和質(zhì)量,從而影響后續(xù)數(shù)據(jù)分析的結(jié)果。為從源頭保證測(cè)序數(shù)據(jù)準(zhǔn)確可靠,在數(shù)據(jù)的所有生產(chǎn)環(huán)節(jié)都嚴(yán)格把關(guān),從根源上確保高質(zhì)量數(shù)據(jù)的產(chǎn)出。建庫(kù)測(cè)序的流程:
Total RNA 樣本檢測(cè)
RNA 富集
雙鏈cDNA合成
末端修復(fù)、加A和接頭
片段選擇和 PCR 擴(kuò)增
文庫(kù)質(zhì)檢
Illumina測(cè)序
1.2. 信息分析流程
??RNA-seq的核心是基因表達(dá)差異的顯著性分析,使用統(tǒng)計(jì)學(xué)方法,比較兩個(gè)條件或多個(gè)條件下的基因表達(dá)差異,從中找出與條件相關(guān)的特異性基因,然后進(jìn)一步分析這些特異性基因的生物學(xué)意義,分析過(guò)程包括質(zhì)控、比對(duì)、定量、差異顯著性分析、功能富集等環(huán)節(jié)。信息分析流程如下圖所示:

2. 信息分析
2.1. 測(cè)序數(shù)據(jù)質(zhì)量控制
對(duì)原始測(cè)序數(shù)據(jù)及去除接頭后的可用數(shù)據(jù)進(jìn)行質(zhì)量評(píng)估。測(cè)序數(shù)據(jù)一般為雙端測(cè)序,因此,每個(gè)測(cè)序樣本會(huì)有兩個(gè)測(cè)序結(jié)果。
評(píng)估的具體內(nèi)容見(jiàn):
RawData-fastqc 文件鏈接: /result/qc/qc_rawdata/*.html
CleanData-fastqc 文件鏈接: /result/qc/qc_cleandata/*.html
Fastqc 格式補(bǔ)充說(shuō)明: /result/qc/qc_Supplement.html
2.2. 參考基因組比對(duì)
??測(cè)序片段(fragments)是mRNA隨機(jī)打斷的,為了確定這些一段由哪些基因轉(zhuǎn)錄來(lái),需要將質(zhì)控后的clean reads比對(duì)到參考基因組上。使用HISAT2軟件將Clean Reads與參考基因組進(jìn)行快速精確的比對(duì),獲取Reads在參考基因組上的定位信息[4]。HISAT2軟件官方手冊(cè)。
??如果參考基因組組裝的較為完善,而且所測(cè)物種與參考基因組一致,且相關(guān)實(shí)驗(yàn)不存在污染,那么實(shí)驗(yàn)所產(chǎn)生的測(cè)序reads成功比對(duì)到基因組的比例會(huì)高于70% (Total Mapped Reads or Fragments)。本項(xiàng)目所用參考基因組為 hg38 ,下載鏈接:Homo_sapiens.GRCh38.dna.primary_assembly.fa.gz,基因組結(jié)構(gòu)注釋文件:Homo_sapiens.GRCh38.90.gtf.gz。
結(jié)果文件:
各個(gè)樣本的比對(duì)情況統(tǒng)計(jì)文件:
/result/map_stat/*.flagstat.txt
2.3. 定量分析
2.3.1. 基因表達(dá)定量
??我們對(duì)每個(gè)樣本分別進(jìn)行基因表達(dá)水平的定量分析,再合并得到所有樣本的表達(dá)矩陣,第一列為基因的ID,其余列為各樣本的原始read count值,seqname列之后為該基因注釋信息。
表格說(shuō)明:
| 表頭 | 說(shuō)明 |
|---|---|
Geneid | 基因名 |
Samples_name* | 樣本的表達(dá)矩陣原始read count值 |
... | 同上 |
seqname | 基因所在的染色體名稱(chēng) |
start | 基因所在染色體的起始位置 |
end | 基因所在染色體的終止位置 |
strand | 基因所在染色體的正負(fù)鏈信息 |
ENSEMBL | 基因名稱(chēng)ENSEMBL |
SYMBOL | 基因名稱(chēng)SYMBOL |
biotype | 基因注釋中對(duì)應(yīng)的biotype |
description | 基因功能描述 |
結(jié)果文件:
原始表達(dá)矩陣及注釋結(jié)果:
result/Quant/gene_counts.xls
2.3.2. 樣本間相關(guān)性
??生物學(xué)重復(fù)通常是任何生物學(xué)實(shí)驗(yàn)所必須的,目前主流期刊也基本要求生物學(xué)重復(fù)。生物學(xué)重復(fù)主要有兩個(gè)用途:一個(gè)是證明所涉及的生物學(xué)實(shí)驗(yàn)操作不是偶然,而是可重復(fù)的。另一個(gè)是為了確保后續(xù)的差異基因分析得到更可靠的結(jié)果。樣品間基因表達(dá)水平相關(guān)性是檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)可靠性和樣本選擇是否合理的重要指標(biāo)。相關(guān)系數(shù)越接近1,表明樣品之間表達(dá)模式的相似度越高。Encode計(jì)劃建議皮爾遜相關(guān)系數(shù)的平方(R2)大于0.92(理想的取樣和實(shí)驗(yàn)條件下)。具體的項(xiàng)目操作中,我們要求生物學(xué)重復(fù)樣品間R2至少要大于0.8,否則需要對(duì)樣品做出合適的解釋?zhuān)蛘咧匦逻M(jìn)行實(shí)驗(yàn)。根據(jù)各樣本所有基因的表達(dá)值計(jì)算組內(nèi)及組間樣本的相關(guān)性系數(shù),繪制成熱圖,可直觀顯示組間樣本差異及組內(nèi)樣本重復(fù)情況。樣本間相關(guān)性系數(shù)越高,其表達(dá)模式越為接近,樣本相關(guān)性熱圖如下圖所示。

圖 1 樣本間相關(guān)性熱圖
圖中橫縱坐標(biāo)為各樣本相關(guān)系數(shù)的平方
結(jié)果文件:
樣本間相關(guān)性熱圖結(jié)果:Quant/cor_pheatmap*
2.3.3. 主成分分析
??主成分分析(PCA)也常用來(lái)評(píng)估組間差異及組內(nèi)樣本重復(fù)情況,PCA采用線(xiàn)性代數(shù)的計(jì)算方法,對(duì)數(shù)以萬(wàn)計(jì)的基因變量進(jìn)行降維及主成分提取。我們對(duì)所有樣本的基因表達(dá)值進(jìn)行PCA分析,如下圖所示。理想條件下,PCA圖中,組間樣本應(yīng)該分散,組內(nèi)樣本應(yīng)該聚在一起。

圖 2 主成分分析結(jié)果圖
圖中橫坐標(biāo)為第一主成分,縱坐標(biāo)為第二主成分
結(jié)果文件:
主成分分析結(jié)果:Quant/pca*
2.4. 差異分析
??基因表達(dá)定量完成后,需要對(duì)其表達(dá)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,篩選樣本在不同狀態(tài)下表達(dá)水平顯著差異的基因。差異分析主要分為三個(gè)步驟。
首先對(duì)原始的readcount進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化(normalization),主要是對(duì)測(cè)序深度的校正。
然后統(tǒng)計(jì)學(xué)模型進(jìn)行假設(shè)檢驗(yàn)概率(pvalue)的計(jì)算
最后進(jìn)行多重假設(shè)檢驗(yàn)校正,得到FDR值(錯(cuò)誤發(fā)現(xiàn)率,padj是其常見(jiàn)形式)[1-2]。
??針對(duì)不同的實(shí)驗(yàn)情況,我們選用合適的軟件進(jìn)行基因表達(dá)差異顯著性分析,具體如下表所示。
表1 表達(dá)差異分析所用軟件及差異基因篩選標(biāo)準(zhǔn)
| 類(lèi)型 | 軟件 | 標(biāo)準(zhǔn)化方法 | pvalue計(jì)算模型 | FDR計(jì)算方法 | 差異基因篩選標(biāo)準(zhǔn) |
|---|---|---|---|---|---|
| 有生物學(xué)重復(fù) | DESeq2(Anders et al, 2014) | DESeq | 負(fù)二項(xiàng)分布 | BH | |log2(FoldChange)| > 0 & padj < 0.05 |
| 無(wú)生物學(xué)重復(fù) | edgeR(Robinson et al, 2010) | TMM | 負(fù)二項(xiàng)分布 | BH | |log2(FoldChange)| > 1 & padj < 0.05 |
??若按照以上標(biāo)準(zhǔn)篩選得到的差異基因過(guò)少(低于100),很有可能導(dǎo)致后面的功能富集分析沒(méi)有顯著性結(jié)果,所以,我們會(huì)根據(jù)項(xiàng)目的具體情況,適當(dāng)?shù)亟档秃Y選差異基因的閾值標(biāo)準(zhǔn)。若項(xiàng)目實(shí)驗(yàn)只關(guān)注某幾個(gè)基因的表達(dá)情況(如基因敲除),不在意富集結(jié)果,從下面的差異分析表格中篩選關(guān)注的那幾個(gè)基因即可。
??一般來(lái)說(shuō),如果一個(gè)基因在兩組樣品中的表達(dá)量差異達(dá)到兩倍以上,我們認(rèn)為這樣的基因是具有表達(dá)差異的。為了判斷兩個(gè)樣品之間的表達(dá)量差異究竟是由于各種誤差導(dǎo)致的還是本質(zhì)差異,我們需要對(duì)所有基因在這兩個(gè)樣本中的表達(dá)量數(shù)據(jù)進(jìn)行假設(shè)檢驗(yàn)。而轉(zhuǎn)錄組分析是針對(duì)成千上萬(wàn)個(gè)基因進(jìn)行的,這樣會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性的累積,基因數(shù)目越多,假設(shè)檢驗(yàn)的假陽(yáng)性累積程度會(huì)越高,所以引入padj對(duì)假設(shè)檢驗(yàn)的P-value進(jìn)行校正,從而控制假陽(yáng)性的比例[3]。
??差異基因的篩選標(biāo)準(zhǔn)是非常重要的,我們給出的標(biāo)準(zhǔn)|log2(FoldChange)| > 1 & padj< 0.05是常用的經(jīng)驗(yàn)值,在實(shí)際項(xiàng)目中可以根據(jù)情況靈活選擇。例如,差異倍數(shù)可以選擇1.5倍,也可以選擇3倍,padj常用的閾值包括0.01、0.05、0.1等。若按照以上標(biāo)準(zhǔn)篩選得到的差異基因過(guò)少,很有可能導(dǎo)致后?的功能富集分析沒(méi)有顯著性結(jié)果。若項(xiàng)目實(shí)驗(yàn)只關(guān)注某幾個(gè)基因的表達(dá)情況(如基因敲除),不在意富集結(jié)果,從下面的差異分析表格中篩選關(guān)注的那幾個(gè)基因即可。反之,如果得到的差異基因數(shù)目過(guò)多,不利于后續(xù)目標(biāo)基因的篩選,這個(gè)時(shí)候可使用更嚴(yán)格的閾值標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行篩選,則可以使用更嚴(yán)格的閾值標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行篩選。
2.4.1. 差異基因的篩選
??通過(guò)Deseq2進(jìn)行差異分析,我們通常采用 |log2FC|>1 & padj < 0.05 進(jìn)行差異基因的篩選,隨后對(duì)差異基因進(jìn)行注釋?zhuān)玫桨⑨屝畔⒌牟町惢蛄斜怼?/p>
結(jié)果文件:
差異基因列表及相關(guān)注釋信息(篩選結(jié)果):result/Enrichment/Allgene_anno.xls
差異基因列表及相關(guān)注釋信息(總的結(jié)果):result/Enrichment/Allgene_anno_ALL.xls
Differential/Allgene_anno*.xls表頭
Differential/Allgene_anno*.xls表頭
Differential/Allgene_anno*.xls表頭
Differential/Allgene_anno*.xls表頭
Differential/Allgene_anno*.xls表頭
Differential/Allgene_anno*.xls表頭
Differential/Allgene_anno*.xls表頭
