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Cas9-基因敲除

CRISPR-Cas9-基因敲除系統(tǒng)(knock out


實驗原理:

       CRISPR-Cas9基因敲除系統(tǒng)是Cas9內(nèi)切酶切割雙鏈DNA,生物體啟動NHEJ修復(fù)途徑,切割位點產(chǎn)生移碼突變,導(dǎo)致基因沉默。

NHEJ修復(fù)途徑是一種錯誤傾向修復(fù)機制,用于在缺少修復(fù)模板的情況下修復(fù)斷裂的雙鏈DNA。該途徑主要用于CRISPR Cas9系統(tǒng)介導(dǎo)的基因沉默。主要用于當(dāng)DNA發(fā)生斷裂時,NHEJ修復(fù)途徑被開啟,DNA斷裂處插入或缺失幾個堿基,然后雙鏈DNA的切割末端連接在一起,這個過程極容易導(dǎo)致切割位點發(fā)生移碼突變,從而沉默該基因(圖3)。因此,在沉默編碼基因時, gRNA應(yīng)靶向基因的N端來確保最大程度的基因破壞。


實驗流程

      1.設(shè)計sgRNA

      2.構(gòu)建sgRNA-Cas9載體

      3.構(gòu)建sgRNA-Cas9穩(wěn)轉(zhuǎn)株

      4 .篩細胞克隆并進行qPCR驗證

      5 .陽性克隆測序,選擇敲除純合細胞株

      6 .篩選細胞單克隆測序


實驗步驟

   ? 1、設(shè)計sgRNA

    針對小鼠LIF基因座(Mus musculusNM_008501)設(shè)計了三種sgRNA。 進行軟件分析以確保sgRNA沒有預(yù)測的脫靶結(jié)合位點。


   ? 2、構(gòu)建sgRNA-Cas9載體

      然后將選擇的sgRNA設(shè)計克隆到pLenti-U6-sgRNA-SFFV-Cas9-2A-Puro All-in-One lentivector中(圖1)。

3.1.4CRISPR-Cas9基因敲除系統(tǒng)①.png

1 sgRNA-Cas9載體圖譜


   ? 3、構(gòu)建sgRNA-Cas9穩(wěn)轉(zhuǎn)株

  利用慢病毒包裝體系構(gòu)建sgRNA-Cas9穩(wěn)轉(zhuǎn)株,進行嘌呤篩選


   ? 4、 篩細胞克隆并進行qPCR驗證

   嘌呤霉素篩選后分離細胞克隆。 提取基因組DNA并進行驗證測定目的基因座是否進行編輯.

3.1.4CRISPR-Cas9基因敲除系統(tǒng)②.png

2 qPCR檢測基因組編輯情況。在野生型(WT)測定中的單個條帶表示沒有發(fā)生編輯; 兩個較小的條帶(總和WT的長度)表示編輯已經(jīng)發(fā)生。圖2表明,克隆 36編輯; 克隆2沒有編輯; 克隆1是不確定的。

  

   ?5 、陽性克隆測序,選擇突變細胞株

   通過Sanger測序進一步分析細胞集落36PCR產(chǎn)物以確定敲除的性質(zhì)(圖3)。

3.1.4CRISPR-Cas9基因敲除系統(tǒng)③.png

3 細胞基因組測序結(jié)果。對于細胞集落3,只檢測到一個突變序列,表明這些細胞可能只是雜合敲除。 在菌落6中檢測到兩種不同的突變序列。

 

   ? 6 、篩選細胞選擇單克隆純合突變細胞株

將菌落6連續(xù)稀釋到96孔板中進行單克隆選擇。 從這些克?。?/span>6a,6b ..)中提取基因組DNA,進行PCR擴增,克隆和測序。

3.1.4CRISPR-Cas9基因敲除系統(tǒng)④.png

 4細胞基因組測序結(jié)果。測序顯示,在兩個等位基因中只有克隆6a具有移碼突變(圖4)。 移碼突變破壞了開放閱讀框架,導(dǎo)致無意義介導(dǎo)的mRNA


   ? 7.進一步測序,確定純合突變

3.1.4CRISRP-Cas9基因敲除系統(tǒng)⑤.png

5 細胞基因組測序結(jié)果




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